详细介绍
荧光定量检测试剂【用法与判定】
1用法
1.1样品处理及模板准备
1.1.1样品处理
·组织样品处理:分别从猪肉组织、淋巴结、脾脏不同位置取样,用手术剪剪碎混匀后取0.1g于研磨器中研磨,加入1.5ml生理盐水继续研磨,待匀浆后转至1.5ml无菌离心管,12000 r/min离心2分钟,取上清200μl备用。
·血液样品无需处理,取200μl备用。
1.1.2模板准备
·根据不同的样本类型,按照下表准备相应的样本用量。
·将样本加入到1.5 ml离心管中,加入下表*体积的Solution A,涡旋震荡20 s,并按照下表*的处理方法,室温静置3-5 min,或95℃金属浴振荡孵育3-5 min。
·样本充分裂解后(95℃金属浴振荡孵育的样本需恢复室温),加入下表*体积的Solution B,并涡旋震荡30 s,12000rpm离心2min,上清即为模板DNA。
·处理后的样本如在2小时内进行下一步试验,请于4℃保存,如不能立即进行下一步试验,请于-20℃保存。
样本类型 | 样本用量 | Solution A | 处理温度及时间 | Solution B |
全血 | 10μl | 100μl | 室温静置3-5min | 100μl |
唾液 | 100ul | 100ul | 室温静置3-5min | 100μl |
口腔拭子 | 1个 | 400μl | 95℃,3-5min | 400μl |
组织匀浆 | 10μl | 100μl | 室温静置3-5min | 100μl |
备注:组织样本加入10倍体积的生理盐水制成组织匀浆液后,可按照血液样本的处理方法进行处理。
1.1.3可利用商品化试剂盒提取核酸进行反应,效果更佳
1.2荧光PCR扩增
1.2.1试剂准备
实验前20分钟将试剂从冰箱取出并恢复至室温,使其*融化,充分混匀后瞬时离心去除管壁吸附液体。
1.2.2配制反应体系
按下表1体系,在配套PCR管中配制反应体系,盖紧管盖后瞬时离心10秒,转移至扩增区。
表1 PCR反应体系
成分 | 体积 |
PCR反应液 | 18μl |
预准备的模板(样本/对照) | 2μl |
总体积 | 20μl |
1.2.3 PCR扩增
快速模式
表2仪器PCR扩增参数
阶段 | 温度 | 时间 | 循环数 |
1 | 95℃ | 30s | 1 |
2 | 95℃ | 10 s | 40 |
60℃ | 20 s(采集荧光信号) | ||
FAM通道采集荧光信号,需要内参的话请同时打开HEX/VIC荧光通道 |
2判定
2.1合理调整阈值线,不同仪器可根据仪器噪音情况进行调整。
2.2试剂盒有效性判定
·阴性对照:无Ct值,线形为直线或微斜,无明显指数增长。
·阳性对照:Ct值≤30,有明显指数增长,呈典型的S型曲线。
2.3样本结果判定
·样本检测结果Ct值≤38,有明显指数增长,判定为阳性,表明样本中检测出非洲猪瘟病毒。
·样本检测结果38<Ct≤40,判定为可疑。应对样本进行复测,若复测结果Ct值仍在38~40之间,有明显指数增长,则判定为阳性,否则为阴性。
·样本检测结果无Ct值,判定为阴性,表明样本中未检测出非洲猪瘟病毒。
荧光定量检测试剂