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养殖场用非洲猪瘟检测试剂盒[风途耗材介绍]

时间:2021-7-22
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  养殖场用非洲猪瘟检测试剂盒[风途耗材介绍]FT-ZWSJ2 Sada na zisťovanie afrického moru ošípaných pre farmy养殖场用非洲猪瘟检测试剂盒[风途耗材介绍]FT-ZWSJ2:ASF没有相应的治疗措施和有效的疫苗,对于该病的控制主要依赖快速实验室诊断和严格的防控措施。因此,建立ASF快速、准确的诊断方法尤为重要。1921年,非洲猪瘟早在肯尼亚报道,引起家猪100%的死亡。此后,该病一直在非洲流行,直到1957年,由于给猪饲喂航班上的垃圾和剩余食物引起该病在葡萄牙的爆发[6]。非洲猪瘟随后在欧洲的其他一些国家蔓延,包括马耳他(1978)、意大利(1967、1980)、法国(1964、1967、1977)、比利时(1985)和荷兰(1986)。

养殖场用非洲猪瘟检测试剂盒

  核酸DNA提取试剂盒(柱膜法)使用说明书

  【产品名称】

  通用名称:病毒DNA提取试剂盒

  英文名称:Extraction Kit for Virus DNA

  【预期用途】

  本试剂盒主要用于疑似病毒等病原感染抗凝血、血淸、拭子、组织、饲料及环境中的病毒DNA的提取,纯化的核酸可适用于各种常规操作及PCR试验。

  【试剂盒组分】

  I、试剂盒组成及贮藏条件

名称

20 T

50 T

1、吸附柱

20个

50个

2、收集管

20个

50个

3、裂解液

5 mL

11 mL

4、洗液I

13 mL

32 mL

5,洗液II

13 mL

32 mL

6.洗脱液

1.2 mL

3  mL

  2、 保存条件及有效期:室温下保存,有效期12个月.

  3、 需自备材料:无水乙醇、1.5 mL无菌离心管、1.5 mL无菌离心管(长臂型)、生理盐水、研钵、无菌

  1mL, 2OOuL、10uL枪头、记号笔等。

  【操作步骤】

  一、样品制备

  1、 血液样品:抗凝血样品置离心管中,8000转/分钟离心2分钟,取上层血浆;非抗凝血样品置离心  管中,待凝固后,8000转/分钟离心2分钟,取上层血清,置于灭菌离心管中,编号待检。

  2、 组织样品:采集脾脏、肝脏、淋巴结、扁桃体等病变组织样品0.1g.组织匀浆器或研钵中充分匀浆或研磨,加入1  mL生理盐水混匀,8000转/分钟离心2分钟,取上清于灭菌离心骨中,编号待检。

  3、 口腔液:进食前用拭子/口腔液采集袋或自制棉线绑纱布团吸引动物咀嚼,收集口腔液大于 500uL,  8000转/分钟离心2分钟,取上清于灭菌离心管中,编号待检。

  4、 饲料:取适量研磨后的饲料(约0.2g),放入含1 mL生理盐水或PBS(PH为7.4)缓冲液的2 mL EP  管屮,振荡混匀,8000转/分钟离心2分钟,取上清于灭菌离心管中,编号待检.

  5、 灰尘:用无菌棉签蘸取适量环境表面上的灰尘,放入含1 mL生理盐水或PBS(PH为7.4)缓冲液的2 mL  EP管中,振荡混匀,8000转/分钟离心2分钟,取上清于灭菌离心管中,编号待检。

  二、DNA的提取

  1、取裂解液200uL加入无核酸酶1.5 mL离心曾屮,分别加入血浆/血清/组织液等样品液200uL.  震荡混匀10秒或颠倒混匀10次,室温放置5分钟(如果室内温度较低时.需放置25C水浴温育),再加入200uL无水乙醇,颠倒混匀10秒;若样品浑浊则先12000转/分钟离心1分钟处理,取上清液,以避免堵塞柱子;

  2、 将液体转入套有收集管的吸附柱中, 12000rpm离心1分钟:

  3、 弃收集管液体,向吸附柱中加600uL洗液I , 12000 rpm离心1分钟;

  4、 弃收集管液体,向吸附柱中加600uL洗液II, 12000 rpm离心I分钟;

  5、 弃收集管液体,12000 rpm离心2分钟,以*去除残留洗液;

  6、将吸附柱转入新的无核酸酸1.5mLEP管(长臂型)中,向柱中央滴加50 uL洗脱液,静置1分钟, 12000  rpm离心1分钟,EP管中液体即为病毒DNA。

  【注意事项】

  1、 实验前诺仔细阅读本试剂盒说明书,严格按照操作步骤执行.在操作过程中对时间、试剂体积等 粘确控制可以获得好的结果。

  2, 样本应新鲜采集使用,或低温运输储存;

  3, 样本具有潜在感染风险,核酸的提取应在核酸提取实验室的生物安全柜中进行。

  4、 核酸提取冇关耗材确保高温灭菌,提取后核酸尽快进入下一步试验或冷冻保存待用。

  5, 试剂使用前应混合均匀,试剂具有一定腐蚀性,使用时请戴手套、做好防护。

  6. 低温下裂解液出现结晶数属正常现象,可在60°C水浴加热助溶后使用。

  7、 实验产生的废弃物应及时收集,远离PCR实验室进行无害化处理。

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