HiPuri Beads全血基因组DNA提取磁珠试剂盒
产品名称 | 货号 | 规格 | 保存 | 价格 |
HiPuri Beads全血基因组DNA提取磁珠试剂盒 | E1010L2100 | 10 T | 4℃ | 550 |
HiPuri Beads全血基因组DNA提取磁珠试剂盒 | E1010L2101 | 100 T | 4℃ | 1550 |
产品介绍
HiPuri Beads全血基因组DNA提取磁珠试剂盒适用于从抗凝处理的全血样品中快速、高效地提取基因组DNA。提取过程采用超顺磁性微球,无需离心操作;使用预制的缓冲液,可直接进行提取,无需预先去除红细胞。
本产品既可以手动进行少量样品的提取,也适合于用自动化工作站进行高通量操作。提取的产物可用于酶切,PCR扩增、检测等后续实验。
产品信息
产品名称 | HiPuri Beads全血基因组DNA提取磁珠试剂盒 |
HiPuri Beads™ ① | 保存于2~8℃,避免冷冻。 |
Lysis Buffer ② | 15~25℃密闭储存。 |
Binding Buffer ③ | 15~25℃密闭储存。*使用前请加入异丙醇。 |
Washing Buffer I ④ | 15~25℃密闭储存。*使用前请加入无水乙醇。 |
Washing BufferⅡ ⑤ | 15~25℃密闭储存。*使用前请加入无水乙醇。 |
Elution Buffer ⑥ | 15~25℃密闭储存。 |
Proteinase K Solution ⑦ | 15~25℃下可保存1年,2~8℃下可*保存。 |
异丙醇 | 分析纯,需用户自备。 |
无水乙醇 | 分析纯,需用户自备。 |
磁性分离器 | 需用户自备,可从李记生物公司购买。 |
保质期 | 2年 |
操作流程
*使用前:
1、在Binding Buffer(③)中加入量(见瓶身标签)的异丙醇(分析纯),并于“口”内打上“√”,混匀后室温下密闭保存。
2、在Washing Buffer I (④)中加入量(见瓶身标签)的无水乙醇(分析纯),并于“口”内打上“√”,混匀后室温下密闭保存。
3、在Washing BufferⅡ(⑤)中加入量(见瓶身标签)的无水乙醇(分析纯),并于“口”内打上“√”,混匀后室温下密闭保存。
准备工作
1、1.5mL离心管:2个/样品
2、单通道移液器:20μL、200μL、1000μL
3、漩涡振荡器
4、垂直混合仪
5、恒温水浴锅/金属浴:55℃
操作步骤:
1、裂解
取一个新的1.5mL离心管,加入200μL的抗凝血液样品(不足200μL时可用PBS或Elution Buffer(⑥)补足),再分别加入10μL的Proteinase K Solution (⑦)和230μL的Lysis Buffer (②),以涡旋振荡器zui大转速漩涡震荡10s后,置于55℃条件下反应5min。
2、结合
加入320μL的在Binding Buffer(③)(检查是否已加入异丙醇)和20μL的HiPuri Beads(①),以涡旋振荡器zui大转速漩涡震荡10min(或漩涡震荡10s后置于垂直混合仪上反应10min)。然后将离心管置于磁性分离器上放置2min,用移液器去上清液并取下离心管。
注:此步骤的磁性分离时间应不少于2min。
3、洗涤
(1)加入600μL Washing Buffer I (④)(检查是否已加入无水乙醇),漩涡震荡1min或用移液器缓慢吹打磁珠20次,使磁珠20次,使磁珠充分重悬,再将离心管置于磁性分离器上直至溶液澄清,用移液器去上滑液并取下离心管。重复该步骤一次。
(2)加入600μL Washing BufferⅡ(⑤)(检查是否已加入无水乙醇),漩涡震荡1min或用移液器缓慢吹打磁珠20次,使磁珠充分重悬,再于室温下静置1min后,将离心管置于磁性分离器上直至溶液澄清,用移液器移去上清液。
注:步骤(2)应尽量除尽洗涤液。
4、干燥
保持离心管于磁性分离器上,于室温下静置10min后,取下离心管。
5、洗脱
加入100~200μL Elution Buffer (⑥),用移液器缓慢吹打磁珠50次,使磁珠充分重悬。然后于55℃条件下加热5min,将离心管置于磁性分离器上直至溶液澄清,转移上清液至新的离心管中,此即为纯化得到的基因组DNA,可保存于-20℃。
注意事项
1、操作之前,请务必认真阅读本产品手册。
2、血液样品的质量对产物DNA的纯化量有较大影响,应避免反复冻融血液样品。
3、应避免对磁珠进行冷冻、离心等操作。
4、磁珠取用前应充分重悬均匀。
5、磁珠干燥前,应使用移液器吸尽洗涤液。
6、应避免磁珠过度干燥,否则会严重降低核酸洗脱效率。
7、建议使用质量好的离心管和移液器吸头,避免因粘附磁珠而造成损失。
8、在96孔板中进行磁性分离操作时,磁珠吸附时间可适当延长至4-5min。